ISSN 1728-2985
ISSN 2414-9020 Online

Aberrant expression of arrestin-1 and recoverin in kidney tumors

L.V. Tsoy, D.O. Korolev, A.Z. Vinarov, M.E. Enikeev, Yu.V. Lerner, D.G. Tsarichenko, N.A. Popov, A.F. Abdusalamov, Yu.P. Gorobets, Yu.L. Demidko, V.A. Varshavskiy, A.A. Zamyatnin, L.M. Rapoport

1) Department of Pathology of Medical Faculty named after A.I. Strukov of FGAOU VO I.M. Sechenov First Moscow State Medical University, Moscow, Russia; 2) Institute for Urology and Human Reproductive Health of FGAOU VO I.M. Sechenov First Moscow State Medical University, Moscow, Russia; 3) GBUZ “City clinical oncological hospital No1 of the Moscow Health Department», laboratory of immunohistochemistry and molecular genetics, Moscow, Russia; 4) FGAOU VO I.M. Sechenov First Moscow State Medical University, Moscow, Russia; 5) Laboratory of Institute for Molecular Medicine of Science of FGAOU VO of I.M. Sechenov First Moscow State Medical University of Minzdrav of Russia (Sechenov University), Moscow, Russia
Introduction. Early diagnosis of renal cell carcinoma (RCC) is extremely difficult, due to the late development of clinical manifestations. The study of the aberrant expression of tumor-associated antigens and a production of autoantibodies to these proteins seems promising and novel method for RCC diagnosis.
Aim: To evaluate the possibility of using arrestin-1 (Arr-1), recoverin (Rec) and autoantibodies against arrestin-1 (AAA1) and recoverin (AAR) as a kidney tumor biomarker.
Materials and methods: Primary kidney tumors and metastases of 62 patients were investigated. For immunohistochemical studies, tissues were incubated with polyclonal antibodies against Rec and Arr1 as the main antibodies. Detection of AAR and AAA-1 in the serum of patients was performed using Western Blot analysis according to a standard protocol.
Results: Among 62 tumors, renal cell carcinoma (RCC) constitutes 50 cases (86.4%), and oncocytoma was diagnosed in 12 patients (19.4%). In 11 (22%) cases of RCC, distant metastases were detected. Positive expression of Rec was observed in almost 71% of all types of kidney tumors. In 61.3% of patients with RCC, Arr-1 expression was seen. In the serum, AAR was found only in 1 patient (1.6%) with RCC. However, unlike AAR, AAA-1 in the serum of patients was observed much more often
(75.8%).
Conclusion: According to our data, the presence of AAA1 in the serum, unlike AAR, can be considered as an early kidney tumor biomarker. The high expression of recoverin and arrestin-1 in kidney tumors suggests the use of these proteins in future as a marker for the diagnosis or even as a potential target for immunotherapy.

Keywords

renal cell carcinoma
recoverin
arrestin-1
autoantibodies

Введение. Опухоли почки составляют 2–3% всех новообразований у взрослых, при этом около 40% всех лиц, страдающих данным заболеванием, имеют риск умереть от его прогрессирования. Заболеваемость различными формами опухолей почек характеризуется тенденцией к неуклонному росту.

В настоящее время в диагностике различных типов опухолей почек используется множество маркеров, но ни один из них не обладает достаточной специфичностью и чувствительностью, не всегда позволяет дифференцировать злокачественное новообразование от доброкачественного [1].

С целью раннего выявления, а значит, и более успешного лечения новообразований проводится поиск новых, более чувствительных и специфических маркеров.

Перспективным представляется использование с этой целью паранеопластических антигенов (ПНА) – белков, отсутствующих в нормальной ткани и появляющихся лишь после ее малигнизации. Большинство ПНА – нормальные белки организма, однако в результате злокачественной трансформации ПНА начинают продуцироваться и в клетках опухоли за пределами иммунотолерантной ткани организма [2].

Отдельная группа антигенов, которые могут аберрантно экспрессироваться в почечной ткани при ее злокачественной трансформации, включает белки, синтезируемые преимущественно в иммунотолерантных тканях (например, нервной или ткани сетчатки глаза). Такие антигены подразделяются на два подтипа: онконевральные и раково-сетчаточные антигены (cancer-retina antigen – CRA) в зависимости от их происхождения. Большинство CRA представляет собой фоторецепторные белки, участвующие в визуальной трансдукции. Их аберрантная экспрессия была отмечена в разных видах злокачественных новообразований, таких как рак желудка, рак легких, колоректальный рак и др. [3,4]. Чаще всего CRA обнаруживались в меланоме, которая экспрессирует такие фоторецепторные белки, как родопсин, трансдуцин, цГМФ-фосфодиэстераза-6, цГМФ-зависимые каналы, гуанилилциклаза, родопсинкиназа, рековерин (Rec) и зрительный аррестин (аррестин-1; Arr-1) [5]. Так как CRA происходят из иммунопривилегированной зоны, они чужды иммунной системе и могут проявлять высокую иммуногенность. Действительно, аберрантная экспрессия CRA в злокачественных опухолях, локализованных за пределами сетчатки, способна вызывать ответ иммунной системы, проявляющийся в выработке специфических антител и Т-клеток. Подобные изменения в функционировании иммунной системы могут приводить к развитию паранеопластических синдромов (ПНПС), отягчающих ход основного заболевания. Ретинальная дегенерация, как ПНПС, встречается примерно у 6% больных раком почки. Некоторые виды CRA были признаны опухолеспецифическими антигенами [5].

Целью исследования было оценить возможность использования Arr-1, Rec, AAA1и AAR в качестве биомаркеров опухоли почки.

Материалы и методы. В исследовании использован материал, полученный в ходе оперативных вмешательств, проведенных 62 пациентам с предварительным диагнозом «опухоль почки». Среди прооперированных было 33 мужчины и 29 женщин, средний возраст которых составил 59±11,6 года (от 25 до 86 лет). Операции были выполнены в Институте урологии и репродуктивного здоровья человека Первого МГМУ им. И. М. Сеченова (Сеченовский Университет). Анализ материала проводили в биопсийной лаборатории, в лаборатории электронной микроскопии и иммуногистохимии централизованного патологоанатомического отделения Первого МГМУ им. И. М. Сеченова.

Фрагменты ткани опухоли фиксировались в 10%-ном нейтральном забуференном формалине на протяжении 24 ч. Далее осуществлялась проводка материала по стандартной методике и заливка в парафин. С парафиновых блоков получали срезы толщиной 4 мкм. Далее материал депарафинировали и окрашивали гематоксилином и эозином.

При световой микроскопии полученных препаратов осуществляли верификацию опухолей почек: светлоклеточный почечно-клеточный рак (ПКР), папиллярный ПКР, хромофобный ПКР и онкоцитома (в соответствии с гистологической классификацией ВОЗ, 2016). Степень дифференцировки (от G1 до G4) оценивали только в случаях светлоклеточного и папиллярного ПКР в соответствии с рекомендациями ВОЗ и Международного общества уропатологов (ISUP). Стадию заболевания определяли по классификации злокачественных опухолей мочеполовой системы [6].

Для иммуногистохимического исследования депарафинированные срезы инкубировали с поликлональными антителами против Rec и Arr-1 (30 мкг/мл). Далее проводили иммунопероксидазное окрашивание с использованием стрептавидин-пероксидазного комплекса.

Реакцию считали позитивной при окрашивании более 10% из 100 опухолевых клеток.

В качестве положительного контроля использовали ткань сетчатки глаза, в качестве отрицательного контроля – образцы ткани почки пациентов мочекаменной болезнью.

Обнаружение антител против Rec (AAR) и против Arr-1 (AAA-1) в сыворотке крови пациентов проводили с помощью анализа вестерн-блот. После проведения электрофореза антигенов к Arr-1 и Rec в 12,5%-ном полиакриламидном геле в присутствии SDS осуществляли перенос белков (по 1,5 мкг каждого белка) из геля на нитроцеллюлозную мембрану «Hybond-C extra» в буфере 1 (Трис-Глицин-Этанол рН=7,5) при постоянной силе тока 300 мА в течение 1 ч. Далее мембраны инкубировали в 5%-ном растворе сухого обезжиренного молока в буфере 2 (20 мМ Трис-HCl рН=7,5), содержащем 500 мМ NaCl и 0,05% Tween 20, в течение 1,5 ч. Затем инкубировали в присутствии сыворотки крови пациентов с опухолью почки (разведение 1:20) в течение 12 ч. Окрашивание проводили при помощи вторичных антител, полученных против иммуноглобулинов человека, связанных с пероксидазой хрена. Для этого мембрану инкубировали в растворе вторичных антител (разведение 1:1000 в буфере 2), после чего промывали буфером 2 для удаления несвязавшихся белков. Окрашивание белков, связавших меченые иммуноглобулины, проводили в буфере 2, содержащем 20 мкл 30%-ной перекиси водорода и диаминобензидина.

Статистическая обработка выполнена с применением методов описательной статистики. Различия между группами считали значимыми при показателе p меньше 0,05.

Результаты. Морфологическая характеристика опухолей. Согласно данным световой микроскопии строение 28 (45,2%) опухолей соответствовало светлоклеточному ПКР, 11 (17,7%) – папиллярному ПКР, 11 (17,7%) – хромофобному ПКР и 12 (19,4%) – онкоцитоме.

Среди 50 пациентов со злокачественными новообразованиями у 11 (22%) человек выявлена стадия рT1а, по 5 (10%) случаев пришлось на стадии рТ1b и рТ2а, у 3 (60%) пациентов диагностирована стадия рТ2b. Cтадия рТ3 диагностирована в 26 (52%) наблюдениях, из которых в 17 – стадия Т3а, в 9 – стадия Т3b, что составило 34 и 18% соответственно (см. таблицу).

Распределение 39 человек с морфологически верифицированным светлоклеточным и папиллярным ПКР в соответствии с классификацией TNM и принятой градацией степени злокачественности опухоли (WHO) было следующим: светлоклеточный ПКР; стадия рТ1а, градация G1 – 1 (2,56%) пациент, G2 – 3 (7,69%), G3 – 1 (2,56%); стадия рТ1b, градация G3 – 1 (2,56%), G2 – 1 (2,56%); стадия рТ2а, G2 – 1 (2,56%); стадия рТ2b, G3 – 3 (7,69%). Наибольшее число случаев светлоклеточного ПКР пришлось на стадию рТ3 (рТ3а, степень злокачественность G2 – 9 [23%] человек, рТ3b, G2 – 6 [15,38%] и G3 – 2 [5,12%]).

Пациентов с папиллярной формой ПКР оказалось почти в 3 раза меньше, чем со светлоклеточной, поэтому процентное соотношение стадий и степени злокачественности оказалось несколько иным: стадия рТ1а, степень злокачественности G2 выявлена у 4 (10,25%) пациентов; стадия рТ2а, G3 – у 2 (5,12%); стадия рТ3а, G1 – у 1 (2,56%), G2 – у 4 (10,25%).

Низкодифференцированные почечноклеточные опухоли, соответствовавшие градации G4, в исследованном материале не встретились. Градация степени злокачественности для оценки хромофобных карцином не применялась.

У 11 (22%) пациентов обнаружены лимфогенные метастазы и отдаленные гематогенные метастазы в надпочечник, головной мозг, легкие, кости и кожу, при этом диагноз светлоклеточного ПКР был верифицирован в 10 (20%) случаях, а хромофобная почечноклеточная карцинома – лишь в 1 (2%).

Экспрессия CRA. Экспрессия Rec и Arr-1 отмечалась при иммуногистохимическом исследовании всех типов опухолей почки, как злокачественных, так и доброкачественных.

Положительная экспрессия Rec наблюдалась в 71% всех опухолей почки (рис. 1), из них в группе онкоцитом экспрессия Rec наблюдалась в 91,7% случаев (рис. 1а), в группе светлоклеточных (рис. 1б), папиллярных (рис. 1в) и хромофобных (рис. 1г) ПКР аберрантная экспрессия Rec наблюдалась в 71,4%, 72,7 и 45,5% соответственно.

Положительная реакция с антителами к Аrr-1 наблюдалась в 61,3% всех опухолей почки (рис. 2). Количество Arr1-положительных образцов каждого оцениваемого типа опухоли составило 75% в группе с онкоцитом (рис. 2а), 50% в группе светлоклеточных ПКР (рис. 2б), 63,6% для папиллярного ПКР (рис. 2в) и 72,7% для хромофобного ПКР (рис. 2г).

При этом при статистической обработке данных значимых различий частоты экспрессии Rec и Arr-1 в зависимости от морфологии опухоли выявлено не было (р=0,1121 и 0,3784 соответственно) (рис. 3, 4).

При исследовании метастазов ПКР отмечался сходный с первичными опухолями иммуногистохимический профиль.

При этом AAR в сыворотке крови обнаружены лишь у 1 (1,6%) пациента с папиллярным ПКР (рис. 5), тогда как AAA-1 – значительно чаще (75,8%) (рис. 6). Частота обнаружения ААА1 в сыворотке крови не зависела от морфологии опухоли (р=0,4098).

Также стоит отметить, что не у всех пациентов с AAA-1 определялась положительная экспрессия Arr-1 в тканях опухоли, так как при исследовании сыворотки крови проводился качественный анализ на присутствие антител, тогда как при иммуногистохимическом исследовании проводился подсчет окрашенных клеток на 100 клеток опухоли.

Обсуждение. В представленном исследовании изучалась экспрессия CRA у пациентов с различными опухолями почки с целью оценки потенциала использования данных белков в ранней диагностике ПКР. Для этого проводилось иммуногистохимическое исследование образцов опухолей и анализ сыворотки крови на наличие аутоантител против данных белков.

В предыдущей работе [4] у больных раком легких частота обнаружения аутоантител в сыворотке крови находилась на уровне 15% (в случаях мелкоклеточного рака легких) и 20% (в случаях немелкоклеточного рака легких), в то время как позитивная реакция в соответствующих опухолевых тканях наблюдалась в 68 и 85% случаев. В ходе настоящего исследования было установлено, что положительная экспрессия рековерина и Arr-1 встречается как в различных вариантах ПКР, так и в доброкачественных новообразованиях почки. Антитела против рековерина в сыворотке пациентов, страдающих раком почки, определялись довольно редко (1,6%), в то время как антитела против Arr-1 встречались в сыворотке крови значительно чаще (75,8%). Следовательно, установленная в нашем исследовании частота встречаемости экспрессии рековерина и Arr-1 в опухоли аналогична данным предыдущих исследований экспрессии при раке легких [4].

Заключение. При проведенном нами ислледовании выявлено, что в различных подтипах опухолей почек была обнаружена экспрессия Rec и Arr-1 c довольно высокой частотой, колеблющейся в диапазоне от 45 до 92%. В то же время АAR в сыворотке крови определяется не более чем в 1,6% наблюдений, тогда как AAA-1, напротив, довольно часто – 75,8%. Как показала наша работа, обнаружение AAR, в отличие от AAA-1, в сыворотке крови не может расцениваться как маркер опухоли почки, однако высокая экспрессия Rec и Arr-1 в опухолях почки позволяет предположить возможность использования в перспективе данных белков в качестве маркера при диагностике или даже потенциальной мишени для иммунотерапии.

About the Authors

Corresponding author: L.V. Tsoy – pathologist, assistant at the Department of Pathology of Medical Faculty named after A.I. Strukov of FGAOU VO I.M. Sechenov First Moscow State Medical University, Moscow, Russia; e-mail: dr.lvtsoy@gmail.com.

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.